Impacto sanitario y economico de la Linfadenitis Caseosa Ovina (página 2)

.Posiblemente el modo más importante de transmisión de C. pseudotuberculosis sea el contacto directo con el material purulento drenado desde los abscesos superficiales purulento cuando contactan dos animales. Pero también ocurre que los exudados respiratorios, ya sean mocos que salen por los ollares o gotas expulsadas al toser o al respirar; se depositan sobre la piel. La penetración del microorganismo puede realizarse de inmediato, si existen soluciones de continuidad en la zona impregnada. Otra posibilidad de contagio por contacto es la invasión retardada., en este caso, el pus permanece amalgamado entre el pelo y la lana a esperas de que se produzca una herida, aunque sea microscópica. En ocasiones tambien la lluvia o los baños arrastran las corinebacterias desde la zona impregnada a la zona herida. (Cubero et al, 2002).

Sobradamente demostrado está la relativamente elevada frecuencia del contagio respiratorio inmediato por la inhalación de aerosoles o gotas en suspensión contaminantes , por otro lado, los animales al lamer el pus que se libera desde un absceso establecen un contagio directo por ingestión; penetrando las corinebacterias fácilmente, bien por una solución de continuidad en la mucosa bucal, labial o lingual o por fijación de las bacterias en las amígdalas (Adekeye,1980; Ellis et al 1987).

La infección puede adquirirse por un contacto sexual, tanto por cubrir hembas con vaginitis específica, como mediante el eyaculado de machos con epididimitis infectados por Corynebacterium pseudotuberculosis . No parece que el contacto venéreo sea muy trascendente, a tenor de la infrecuencia de las balanopostitis purulentas y por la pérdida de apetito sexual en los machos con lesiones genitales (Mostafa,1971).

Contagio indirecto.

La transmisión indirecta es la forma más habitual de infección, sobre todo por vehículos, auque también es posible la intervención de vectores. En ambos casos la transmisión es mecánica, nunca propagativa , cualquier vehículo resulta válido; pero son más idóneos aquellos que además de portar el agente son capaces de provocar una herida por la que penetren las corinebacterias (Cubero, 2002), tambien por medio de arbustos y espinos de la zona de pastoreo se puede depositar el material infectado, convirtiéndose en vehículos de C. pseudotuberculosis al penetrar en la piel de los animales sanos (Willians, 1981).

El contagio también se instaura por el consumo de alimentos y agua contaminados al evacuarse pus de abscesos cefálicos y cervicales, o con exudados respiratorios . Si el alimento porta componentes muy groseros, como gramíneas punzantes, además provocan traumatismos en la mucosa bucal, con lo que se facilita la penetración oral. En las cabras, por sus hábitos alimenticios más proclives al consumo de arbustivas y espinosas, el contagio oral se muestra más habitual (Ashfag,1979; Burrell,1981). Las garrapatas y sus larvas toman parte en la transmisión natural de la enfermedad (Benham,1962; Ashfag,1979; Hein, 1981)., y aunque no ha podido aislarse C. pseudotuberculosis de moscas atrapadas en áreas de conocida alta incidencia, si se sabe que estas permanecen como portadores mecánicos del gérmen durante periodos superiores a tres días (Nayi, 1976). Investigadores israelíes efectuaron un estudio destinado a evaluar la función de la mosca común (Musca domestica L.), como portador de Corynebacterium pseudotuberculosis en explotaciones lecheras, y concluyeron que esta especie desempeñaba un importante papel en ese sentido (Braverman, 1999).

Diagnóstico

Diagnostico diferencial .

En otras infecciones piolinfadeníticas (Arcanobacterium pyogenes, Staphylococcus aureus) la incubación es más corta y la formación del material purulento es más rápida que en la "linfadenitis caseosa (Leon Vizcaino, 2002). .Otro detalle epidemiológicio que orienta, aunque no concluye, la diferenciación entre infecciones linfadeníticas es la edad de los enfermos. suele afectar a los adultos, mientras que inciden tanto en jóvenes como en adultos (Al-Ranashdeh, 2000).

Otros agentes contagiantes (Actinobacillus seminis, Brucella ovis) pueden provocar la aparición de abscesos escrotales y epididimarios susceptibles de ser también confudidos clínicamente (Richard, 1979; León, 1985) .Entre otras tambien, deben diferenciarse de las Bronconeumonías verminosas y de otras neumopatías crónicas de carácter enzoótico con sintomatología clínica análoga, tales como Maedi-Visna, Adenomatosis pulmonar, Bronconeumonías esporádicas, Bronconeumonías producidas por Pasterella multocida, Bronconeumonías neorikettsianas, Bedsoniasis y Oestrosis de las cavidades nasales (Respaldiza, 2001). Puede incurrirse en confusiones con la Tuberculosis; de ahí que la enfermedad también se denomine "Seudotuberculosis" . Semejante confusión no representa un problema diagnóstico de relevancia en la patología ovina; puesto que la Tuberculosis se muestra escasamente prevalente en la oveja , pero por razón inversa, plantea frecuentes dudas en la cabra (León Vizcaino, 2002).

La anemia hemolítica neonatal y de animales jóvenes, aunque típica de la infección por C. pseudotuberculosis, no es patognomónica de esta enfermedad. El cuadro clínico, caracterizado por ictericia, anemia, hemoglobinuria, colección de fluidos rojo oscuros en las cavidades orgánicas y edema de pulmón, de curso agudo y evolución fatal, pueden también ocurrir por casos de enterotoxemia por cepas altamente toxigénicas de Clostridium perfringens tipo A. lograndose solo por el análisis microbiológico y toxínico discernir entre ambas enfermedades (Leon Vizcaino, 2002).

Diagnóstico inmunológico.

Una gama muy amplia de técnicas inmunitarias han sido aplicadas sobre todo a la detección de anticuerpos, y algunas también a la respuesta de base celular frente a

C. pseudotuberculosis.Un grupo se basan en la detección de la antitoxina en el suero (anticuerpos frente a la exotoxina de C. pseudotuberculosis, mediante la neutralización de algunas de las acciones específicas de la exotoxina, como son su acción inhibidora de la ß-hemolisina de Staphylococcus aureus (técnica de inhibición de la antihemolisina), la acción exaltante de la hemolisis de Rhodococcus equi (técnica de inhibición de la hemólisis sinérgica), hemólisis directa de los eritrocitos de cordero (técnica de inhibición de la hemolisis), acción letal sobre el ratón (técnicas de seroneutralización letal) y dermonecrosis en el conejo ,neutralización de la actividad dermonecrótica (Leon Vizcaino, 2002).

Otro grupo de técnicas identifican los anticuerpos dirigidos contra los antígenos de pared o del soma de la célula bacteriana, mediante reacciones de aglutinación, fijación del complemento, inmunodifusión, inmunofluorescencia y ELISA.En el caso de la prueba ELISA, pocos autores abordan el momento de aparición de los anticuerpos antitoxina en sangre, ni el momento en que dicha técnica los comienza a detectar. Ruíz (2002) obtuvo la aparición de elevados niveles de anticuerpos en todos los animales inoculados a los 14 días post inoculación , lo cual resulta precóz con relación a lo reportado por otros investigadores (Brown et al .1985). Otros indican que no es detectable serológicamente hasta los 15 a 17 días de la infección mediante la técnica de aglutinación y a los 20 a 25 días mediante la técnica de inhibición de hemólisis (Kuria et al , 2001).

Ter-Laak et al (1992) diseñaron un ELISA sandwich para detectar anticuerpos frente a la exotoxina de Corynebacterium pseudotuberculosis, con una especificidad y sensibilidad cerca del 100% , los resultados dudosos eran discriminados mediante immunobloting.. Mientras que Sting et al (1998) utilizaron en la técnica ELISA antígenos de la pared celular (20-120 kDa) y la exotoxina (30-50 kDa) para detectar los animales infectados y animales vacunados. Dercksen et al (2000) desarrollaron un ELISA sandwich para detectar anticuerpos frente a los antígenos de la pared celular o de la toxina de Corynebacterium pseudotuberculosis, con una especificidad del 98+-1% en cabras y 99+- 1% en ovejas y una sensibilidad del 94+-3% en cabras y 79+- 5% en ovejas, que resulta de enorme utilidad en los programas de control y erradicación de la Linfadenitis caseosa.

Control mediante vacunación

.La vacunación parece ser la única opción viable para reducir el número de infectados cuando la presentación de la linfadenitis caseosa es endémica. El programa de vacunación no elimina totalmente la infección del rebaño, y la venta de portadores asintomáticos es una reserva que hace que se mantenga un problema potencial. Se han estudiado diferentes tipos de vacunas para el control de la linfadentis caseosa (Cubero et al , 2002).

Vacuna viva con cepas mutantes atenuadas

Respecto a la Cepa mutante atenuada Toxminus, Hodgson et al (1992) y Hodgson et al (1994) concluyeron que resulta un buen candidato para utilizarlo como vacuna viva ya que trás la administración de una sola dósis del vector "Toxminus" tres de los genes inducen una respuesta de anticuerpos específicos frente a la proteína recombinante, administrando una sola dosis vía oral de Toxminus indujeron una fuerte respuesta inmune humoral y celular que protegía los animales de la cepa de campo. Por otra parte, Simmons et al (1997) y Simmons et al (1998) señalaron que el mutante atenuado AroQ era un buen candidato como vacuna viva, administraron vía subcutánea con mutante AroQ de Corynebacterium pseudotuberculosis, pero no protegía a las ovejas de la infección con la cepa de campo aunque si reducía la severidad de la enfermedad.

Vacunas inactivadas.

Walker et al (1994) administraron en ovejas dos dosis de 100 microgramos de un antígeno de 40 kDa con un adjuvante de hidróxido de aluminio que confería protección frente a la infección con Corynebacterium pseudotuberculosis, con 82% de reducción en la proporción de ovejas infectadas y 98% de reducción de lesiones pulmonares. Standford et al (1998) evaluaron la eficacia de dos vacunas inactivadas en explotaciones con elevada incidencia de linfadentis caseosa (50-94%), comprobando que eran capaces de inducir una elevada respuesta inmune durante

12 meses que descendía la prevalencia notablemente, reducía la incidencia de abscesos y las reacciones locales en el punto de inoculación. Piontkowski y Shilvers (1998) administraron dos dósis de una bacterina toxoide con un intervalo de 4 semanas y posteriormente valoraron el grado de protección conferido infectando experimentalmente a las animales a las 32 semanas. La protección vacunal consiguió decrecer la prevalencia y el número de abscesos tras la infección secundaria. Vacunas elaboradas utilizando el sobrenadante de un cultivo de Corynebacterium pseudotuberculosis rico en la exotoxina (Hodgson et al.,1999). que se inactiva con formalina, confirieron a las ovejas una protección del 95 % Kutschke et al (2000) demostraron que la vacunación durante dos años con células totales lisadas de Corynebacterium pseudotuberculosis, administrando dos dósis con un intervalo de 4 semanas y revacunando semestralmente, consigue reducir significativamente la presentación de nuevos casos de pseudotuberculosis clínica. Hodgson et al (1999) elaboraron una vacuna mediante la inactivación de la fosfolipasa D genéticamente, pero solo protegía al 44 % de las ovejas. y Chaplin et al (1999) señalan que la vacunación de las ovejas con una fosfolipasa D genéticamente detoxicada (Delta PLD) resultó efectiva parcialmente frente al Corynebacterium pseudotuberculosis.

Bibliografía

ADDO PB , DENNIS SM. 1977; Corynebacteria associated with diseases of cattle, sheep and goats in northern Nigeria. Brit Vet J135: 334-339.

ADEKEYE JD, SHANNON D, ADDO PB 1980. Mastitis in a cow caused by with Corynebacterium pseudotuberculosis ovis. Vet Rec.; 106: 270-274

ALMAGUER PEREZ Y. 2002 Caracterización clínico-hematológica, bioquímica y anatomopatológica de la seudotuberculosis ovina. Producción Animal. Revista de Sanidad Animal (Camagüey).www.veterinaria.org./revistas/redvet/yalmaguer

AL-RAWASHDEH, O., AL-QUDAH, K. 2000. Effect of shearing on the incidence of caseous lymphadenitis in Awassi sheep in Jordan. J Vet Med B Infect Dis Vet Public Hlth. 47: 287-293.

AMEH JA, ADDO PB, ADEKEYE JO, GUANG EO. 1993 Prevalence of clinical mastitis and of intrammamary infections in Nigerian goats. Prevent Vet Med.; 17: 41-46

ANÓNIMO. 2003. Importancia de la carne ovina en el consumo mundial http://www.monografias.com/ Diseño de la planta de un matadero de ovinos con una producción de 200 carcazas – dia

ASHFAG MK, CAMPBELL SG. 1979 A survey of caseous lymphadenitis and its aetiology in goats in the United States. Vet Med Small Anim Clin74: 1161-1165.

ASHFAQ, M.K., CAMPBELL.S.G. 1980. Experimentally induced caseous lymphadenitis in goats. Am J Vet Res. 41: 17891792.

AUGUSTINE JL, RENSHAW HW. 1986 Survival of Corynebacterium pseudotuberculosis in axenic purulent exudate on common barnyard fomites. Am J Vet Res 47: 713-715.

BAIRD G. 1997. Caseous lymphadenitis: an increasing cause for concern. Vet Rec; 140: 611.

BARKSDALLE, L. 1981. The genus Corynebacterium. In "The Prokariotes: A hansbook on habitats, isolation and identification of bacteria". (I. Starr P. Mortimer, eds). Vol.II, Chapt. 141. Springer-Verlag, New York: 1827-1837.

BATEY RG. 1986; Frequency and consequence of caseous lymphadenitis
in sheep and lambs slaughtered at western Australian abattoir. Am J Vet Res.
47: 482-485

BATEY, R.G. 1986. Pathogenesis of caseous lymphadenitis in sheep and goats. Aust Vet J, 63: 269-272.

BEER J. 1981. Enfermedades infecciosas de los animales domésticos. Tomo 2. Ed.

Acribia. España .pp 38-39.

BENHAM CL, SEAMAN A, WOODBINE M. 1962 Corynebacterium pseudotuberculosis and its role in diseases of animals. Vet Bull.; 32: 645-657

BERAZAÍN, ROSALINA 1979 .Fitogeografía. Universidad de la Habana,Facultad de Biología. La Habana.pp 313.

BETANCOURT J:E: ; LESCAY.TEJEDA M. 1986. Seudotuberculosis caprina- ovina.Consideraciones patomorfológicas y correlaciones complementarias. Memorias III Congreso Cubano de ciencias verterinarias..

BETANCOURT, BULNES, C. A., LESCAY, J ; TORRES, R. 2002 Pseudotuberculosis

Ovino Caprina Estudio retrospectivo anatomopatologico en la Provincia Santiago de Cuba . Memorias Congreso PANVET.

BIBERSTEIN EL, KNIGHT HD, JANG S. 1971 Two biotypes of Corynebacterium pseudotuberculosis. Vet Rec 89: 269-272.

BLOOD, D.C., HENDERSON, J.A., RADOSTITS, O.M. 1979. Caseous lymphadenitis in sheep. In "Veterinary Medicine". 5th ed. Bailliere Tindall, Londres, 420-421.

BRAVERMAN A. CHIZOV-GINZBURG, A. SARAN & M. WINKLER 1999 Papel de la

mosca común (Musca domestica) como portador de Corynebacterium pseudotuberculosis en rebaños lecheros de Israel. Rev. sci. tech. Off. int. Epiz., 1999, 18 (3), 681-690

BROGDEN KA, CUTLIP RC, LEHMKUHL HD. 1985 Immunogenicity of Corynebacterium pseudotuberculosis and the effect of adyuvants in mice. J Com Pathol; 95: 167-173

BROGDEN, K.A., CUTLIP, R.C., LEHMKUHL, H.D. 1984.- Experimental

Corynebacterium pseudotuberculosis infection in lambs. Am J Vet Res, 45: 1532- 1534.

BROWN CC, OLANDER HJ. 1987 Caseous lymphadenitis in goat and sheep. A review.

Vet Bull.; 57:1-12

BROWN, C.C., OLANDER, H.J., BIBERSTEIN, E.L., MORENO, D. 1985.- Serologic

response and lesions in goats experimentally infected with Corynebacterium pseudotuberculosis of caprine and equine origins. Am J Vet Res, 46: 2322-2326.

BRUMBAUGH GK, EKMAN TL. 1981 Corynebacterium pseudotuberculosis: Bacteremia in two horses. JAVMA. 178: 300-301.

BURRELL DH. 1981 Caseous lymphadenitis in goats. Aust Vet J.; 57:105-110.

CABRERA J.;MARTÍNEZ A. Y RODRÍGUEZ M.V. 1981. Reporte de Linfadenitis caseosa en un lote de carneros de la provincia Habana. Res. II seminario científico del CENSA pp.191

CAMERON, C.M. 1971. Mechanisms of immunity to Corynebacterium pseudotuberculosis in mice using inactivated vaccine. Onderstepoort J Vet Res, 38: 73-82.

CAMERON, C.M. 1982. The immunogenicity of Corynebacterium pseudotuberculosis.

Proc Ann Meet Goat Prod Dis, 3: 462-468.

CAMERON, C.M., BESTER, F.J. 1984. An improved Corynebacterium pseudotuberculosis vaccine for sheep. Onderstepoort J Vet Res, 51: 263-267.

CAMPBELL SG, ASHFAQ MK, TASHJIAN JJ. 1982; Caseous lymphadenitis in goat in USA. Proce. of the Ann Meet Goat Produc and Dis. 3: 449-453

CARISSIMO J. I. 2000. El ovino en la provincia de Buenos Aires http // www.monografias .com htm_

CHAPLIN, P.J.; DE ROSE, R.; BOYLE, J.S.; MCWATERS, P.; KELLY, J.; TENNENT,

J.M.; LEW, A.M.; SCHEERLINCK, J.P. 1999 Targeting improves the efficacy of a DNA vaccine against Corynebacterium pseudotuberculosis in sheep. Infection and Immunity. 67(12): 6434-8

CHIKAMATSU S, ZHAO H, KIKUCHI N, HIRAMUNE T. 1989 Seroepidemiological survey of Corynebacterium pseudotuberculosis infection in sheep in Japan using Enzyme-linked Immunosorbent Assay and Immunodiffusion Jpn J Vet Sci 51: 887- 891

COLES EMBERT.H.1968.Patología y diagnóstico
veterinario.Edit. Interamerincana . 10 edición . México.
Pp 28-111.

COLES GC. 1997 Caseous lymphadenitis: an increasing cause for concern. Vet Rec.; 140: 635.

CONNOR KM, QUIRIE MM, BAIRD G, DONACHIE W. 2000 Characterization of United Kingdom isolates of Corynebacterium pseudotuberculosis using pulsed-field gel electrophoresis. J Clin Microbiol 38: 2633-2637.

COUTERAU PH, LAVAL A. 1974; La linphadenie caséeuse: maladie des abscés du muton. Rév Méd Vét. 125: 637-646

CROMBET, H.A. 1983.Control de la Seudotuberculosis caprina en una empresa de la provincia Habana. Informe técnico IMV.

CUBERO P, GONZALEZ CANDELA M, MARTÍN ATANCE P., LEÓN VIZCAINO,L 2002

Estrategias de policía sanitaria en la Linfadenitis caseosa .Rev. Ovis no. 78 Enero DENNIS SM, BAMFORD VW. 1966; The role of Corynebacterium pseudotuberculosis in perinatal lamb mortality. Vet Rec. 79: 105-108

DELGADO CABRERA L. (1994) .Laboratorio territorial.IMV. V Clara (comunicación personal).

DERCKSEN,-D-P; BRINKHOF,-J-M; DEKKER-NOOREN,-T; MAANEN,-K; BODE,-C-F;

BAIRD,-G; KAMP,-E-M. . 2000 A comparison of four serological tests for the diagnosis of caseous lymphadenitis in sheep and goats. Vet-Microbiol Jul 31; 75(2): 167-75

DOHERR,-M-G; CARPENTER,-T-E; HANSON,-K-M; WILSON,-W-D; GARDNER,-I-A

1998 Risk factors associated with Corynebacterium pseudotuberculosis infection in California horses. Prev-Vet-Med. Jun 30; 35(4): 229-39

DUNCAN,J.R. AND PRASSE,K.W. 1986 Veterinary Laboratory Medicine. 2a Ed.Iowa State University. Press.

ELLIS TM, SUTHERLAND SS, WILKINSON FL, MERCY AR, PATON MW.
1987 The role of Corynebacterium pseudotuberculosis lung lesions
and the transmision of this bacterium to other sheep. Aust Vet J.; 64: 261-263

EUZEBY P. 1999. Corynebacterium pseudotuberculosis. Dictionnaire de Bactériologie Vetérinaire http:// www Bacterio.cict.fr

FAO 2001 Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación, Mejorando la nutrición a través de huertos y granjas familiares". Manual de capacitación para trabajadores de campo en América Latina y el Caribe,Hoja de Información 13

FRÖHNER, E. Y ZWICK, G.1962.Patología y terapeutica veterinaria. Tomo III. Ed.Gilí Barcelona. Pp 446-451.

GALINA, M.A. 1984. Caseous lymphadenitis in goats: a review of the disease. In "Les maladies de la chèvre". Les Colloques de l" INRA nº 28. Ed. INRA, Paris: 615-618.

GARRIDO F 1997. Aspectos etiológicos y epidemiológicos de las mamitis caprinas en la provincia de Granada. Tesis Doctoral Universidad de Murcia.

GIRONÉS O, SIMÓN MC, ALONSO JL. 1992 Linfadenitis
caseosa I. Importancia económica y sanitaria. Etiología, epidemiología
y patogenia. Med Vet; 3: 135-148

GIRONÉS, O. 1990. Demostración experimental de las consecuencias clínicas y epidemiológicas de la infección por Corynebacterium pseudotuberculosis en ovejas reproductoras y en corderos recién nacidos. Estudio serológico. Tesis Doctoral. Facultad de Veterinaria, Universidad de Zaragoza. 195pp.

GIRONÉS, O., SIMÓN, M., ALONSO, J. 1992. Linfoadenitis caseosa. II. Cuadro clínico, diagnóstico, tratamiento y profilaxis. Med Vet. 9: 149-155.

GUADA F. 1986 Nueva profilaxis vacunal para una vieja enfermedad. XI Jornadas de ovinotécnia y caprinotécnia de Palencia, pp.6-10..

HABELA,M,SEVILLA.R.G.CORCHERO,E,FRUTO,J.M. Y PEÑA,J.-
2005 Nematodosis gastrointestinales en ovino.http://www.exopol.com/default.html.

HAMILTON NT, PERCEVAL A, AARONS BJ, GOODYEAR JE. 1968

Pseudotuberculosis axillary lymphadenitis causes by Corynebacterium pseudotuberculosis ovis. Med J Austr.; 2: 356-361.

HARD, G.C. 1972. Examination by electron microscopy of the interaction between peritoneal phagocytes and Corynebacterium ovis. J Med Microbiol, 5: 483-490.

HARD, G.C. 1975. Comparative toxic effect of the surface lipid of Corynebacterium ovis on peritoneal macrophages. Infec Immun, 12: 1439-1449.

HEIN WR, Cargill CF. 1981 An abbatoir survey of diseases of feral goats. Aust Vet J.; 57: 498-503.

HELLMANN, E., HARTWIGK, H.,. MARX, M., LÜBKE, A. 1995.
Corynebacterium- Infektionen. In "Handbuch der bakteriellen
Infektionen bei Tieren" (H. Blobel und Th. Schlieb ereds.). Band II, teil
3. Gustav Fischer Verlag Jena, Stuttgart, 155-195.

HIEPE,TH. 1974 .Enfermedades dela oveja. Ed. Acribia. Zaragoza.pp 160-162.

HODGSON, A.L.; CARTER, K.; TACHEDJIAN, M.; KRYWULT, J.; CORNER, L.A.;

MCCOLL, M.; CAMERON, A 1999. Efficacy of an ovine caseous lymphadenitis vaccine formulated using a genetically inactive form of the Corynebacterium pseudotuberculosis phospholipase D. Vaccine. 17(7-8): 802-8

HODGSON, A.L.; KRYWULT, J.; CORNER, L.A.; ROTHEL, J.S.; RADFORD, A.J. 1992

Rational attenuation of Corynebacterium pseudotuberculosis: potential cheesy gland vaccine and live delivery vehicle. Infection and Immunity.; 60(7): 2900-5.

HODGSON, A.L.; TACHEDJIAN, M.; CORNER, L.A.; RADFORD, A.J.
1994 Protection of sheep against caseous lymphadenitis by use of
a single oral dose of live recombinant Corynebacterium pseudotuberculosis. Infection
and Immunity.; 62(12): 5275-80

HOLSTAD G. . 1986 Corynebacterium pseudotuberculosis infection in goats. II. The prevalence of caseous lymphadenitis in 36 goats herds in northern Norway. Acta Vet Scand; 27: 584-597.

HOMMEZ, J., DEVRIESE, L., VANEECHOUTTE, M., RIEGEL, P., BUTAYE, P.,

AESEBROUCK, F. 1999. Identification of nonlipophilic corynebacteria isolated from dairy cows with mastitis. J Clin Microbiol. 37: 954-957

HSU T.Y., RENSHAW, H.W. , LIVINGSTON, C.W., AUGUSTINE, J.L., ZINK, D.L. y

GAUER, B.B. 1985. Corynebacterium pseudotuberculosis exotoxin: fatal hemolytic anemia induced in gnotobiotic neonatal small ruminants by parenteral administration of preparations containing exotoxin. Amer J Vet Res, 46: 1206-1211.

HUGHES JP, BIBERSTEIN EL, RICHARD WP. (1962). Two cases of generalised Corynebacterium pseudotuberculosis infections in mares. Vet Cornell.; 52: 51-62.

HUGHES JP, BIBERSTEIN EL. 1959 Chronic equine abscesses associated with Corynebacterium pseudotuberculosis. J Am Vet Med Ass.,. 135: 559-560.

INSTITUTO DE MEDICINA VETERINARIA provincia Sancti Spiritus 2004. Informe Bioestadística cierre de año..

INSTITUTO DE MEDICINA VETERINARIA provincia Sancti Spiritus.2004.Archivos del laboratorio provincial de diagnósticos.

JENSEN, R., SWIFT, B.L.. 1982. Caseous lymphadenitis (Corynebacterium pseudotuberculosis). In "Diseases of Sheep". Lea & Febiger: 313-315.

JERÓNIMO R. RUIZ LEÓN; MARITZA BARRERA VALLE; MARÍA T. FRÍAS; CARLOS

BULNES; REINA DURAN; MARÍA C. MUÑOZ . 2003. Evaluación de un elisa indirecto para el diagnóstico de la linfadenitis caseosa mediante la reproducción experimental de la enfermedad y aspectos clínicos http://www..veterinaria.org/redvet

JOLLY, R.D. 1965a. The pathogenesis of experimental Corynebacterium ovis infection in mice. NZ Vet J, 13: 141-147.

JOLLY, R.D. 1965c. The pathogenic action of the exotoxin of Corynebacterium ovis. J Comp Pathol, 75: 417-431.

JOLLY, R.D. 1966. Some observations on surface lipids of virulent and attenuated strains of Corynebacterium ovis. J Appl Bacteriol, 29: 189-196.

JONES, D., COLLINS, M. 1986. Irregular, nonsporing Gram-positive rods. In "Bergey"s manual of determinative bacteriology" (P. Sneath, N. Mair, E. Sharpe, eds.). 9th ed., vol. 2, Williams & Wilkins, Baltimore, 1261-1276.

JUBB, K.V.F.; KENNEDY, P.C.; PALMER M. 1993 – Caseous lymphadenitis.Pathology of domestic animals 4ta Edic.. Vol III , 238 – 39 13

KNIGHT HD 1969. Corynebacterial infections in the horse: problems of prevention.

JAVMA.; 155: 446-452.

KOUBA V. 1987. Epizootiología general. 2da Edición Pueblo y educación. Pp.302-303.

KURIA,-J-K; MBUTHIA,-P-G; KANG'ETHE,-E-K; WAHOME,-R-G. . 2001 Caseous

lymphadenitis in goats: the pathogenesis, incubation period and serological response after experimental infection. Vet-Res-CommunFeb; 25(2): 89-97

KUTSCHKE, L; GANTER, M; KABA, J. 2000 Efficacy of a flock-specific pseudotuberculosis vaccine in goats. Dtsch Tierarztl Wochenschr.; 107(12): 495- 500

LÄMMLER, CH., HARTWIGK, H. 1995. Actinomyces pyogenes und Arcanobacterium haemolyticum. In "Handbuch der bakteriellen Infektionen bei Tieren" (H. Blobel und Th. Schlib er eds.). Band II, teil 3. Gustav Fischer Verlag Jena, Stuttgart, 196-240

LANGENEGGER CHH, LANGENEGGER J, SCHERER PO. 1991 Prevalència e

diagnósico comparativo da linfadenite caseosa em caprinos do Estado do Rio de Janeiro. Pesq Vet Bras.; 11: 31-34

LEÓN L. 1985 Patología y control de las infecciones animales por Corynebacterias. En Microbiología 83. IX Congreso Nacional de Microbiología. Ed. Sociedad Española de Microbiología Vol. II : 411-416

LEÓN VIZCAINO,L, GARRIDO ABELLÁN F. GONZALEZ CANDELA M.. CUBERO P

2002 Anatomía patológica se la Seudotuberculosis. http: // exopol.com

LEÓN VIZCAINO,L,GONZALEZ CANDELA M.GARRIDO ABELLÁN F. CUBERO

P.2002. Diagnóstico de la Seudotuberculosis. http:// exopol . com

LEON, L. 1985. Patología y control de las infecciones animales por corinebacterias.

411-416.

LÉRTORA, W.J.; MONTENEGRO, M.A.; BURNA, A.; SÁNCHEZ NEGRETTE, M, 2004

Pseudotuberculosis ovina, ,Rev. Vet Argentina. 15: 1, 31–33

LITERAK I, SKRIVANEK M, SKALKA B, CELER V. 1995Antibodies to certain infections on large goat farms in the Czech Republic. Vet Med (Praha).; 40: 1333-136

MACKANESS, G.B., BLANDEN, R.V.. 1967. Cellular immunity. Prog Allergy, 11: 89- 140.

MADDY, K.T. 1953.- Caseous lymphadenitis of sheep. J Am Vet Med Ass, 122: 257- 259.

MÁRQUEZ N. A. Q 1970.Estudio clínico de la Linfadenitis caseosa en caprinos de Venezuela criollos e importados.Rev. Medicina veterinaria y parasitología.Maracaibo .Vol.XXIII .Nº1-8. Pag. 246-

MECHIE SC. 1998 Screening for caseous linphadenitis. Vet Rec.; 142: 47.

MENA, R.; 1995. – Procesos abscedativos en ovinos mestizos Pelibuey por C. Pseudotuberculoso Estudio clínico- epizootiológico. Memorias 4 Cong. Nac. Ciencias veterinarias.

MIERS KL, LEY WB. 1980 Corynebacterium pseudotuberculosis infections in horses . Study of 117 clinical cases and consideration of aetio-pathogenesis. JAVMA.; 177:: 250-253

MOLLER K, AGERHOLM JS, AHRENS P, JENSEN NE, NIELSEN TK. .
2000 Abscess disease, caseous lymphadenitis and pulmonary adenomatosis
in imported sheep. J Vet Med B; 47:55-62.

MOSTAFA AS. 1971. Some reproductive disorders in Merino rams. Thesis. Faculty of Veterinary Medicine, Cairo University.

MOUSING J, KYRVAL J, JENSEN TK, AALBAEK B, BUTTENSCHON J, SVENSMARK

B, WIUEBERG P. 1997 Meat safety consequences of implementing visual postmorten meat inspection proccedures in Danish slaughter pigs. Vet Rec.; 140: 472-477.

NAIRN ME, ROBERTSON JP, MCQUADE CC. 1977; The control of caseous lymphadenitis in sheep by vaccination. Proce 54th Ann Conf Austr Vet Ass. 54: 159- 161.

NAIRN ME, ROBERTSON JP. . 1974 Corynebacterium pseudotuberculosis infections of sheep: role of skin lesions and dipping fluids. Austr Vet J50: 537-542.

NAKAMURA K, MOMOTAMI E, YOKOMIZO Y, YUGI H, SHOYA S. 1981 Pathological

changes in sheep infected with Corynebacterium pseudotuberculosis. Natl Inst Anim Health Q (Jpn).; 21: 150-151.

NAYI G. 1976 Caseous lymphadenitis in sheep: methods of infection. J South Afr Vet Med Assoc. 47: 197-208.

OROZCO, A. 1999: Flora y vegetación del Área de Arenas Silícicas de Casilda. Tesis en opción al grado académico de MSc. en Botánica. Sistemática y Evolución de Plantas Superiores. Jardín Botánico Nacional. Universidad de La Habana.

PATON MW, MERCY AR, WILKINSON FC. 1988 The effects of Caseous lymphadenitis on wool production and bodyweight in young sheep. Austr Vet J. 65 117-119.

PATON MW, ROSE IR, HART RA, SUTHERLAND SS, MERCY AR, ELLIS TM,

DHALIWAL JA. 1994 New infectiom with Corynebacterium pseudotuberculosis reduces wool production. Aust Vet J 71 (2): 47-49

PEKELDER JJ. 1992 Caseous lymphadenitis in the Netherlands. Vet Rec.; 131: 568

PÉPIN, M., PARDON, P., LANTIER, F., MARLEY, J., LEVIEUS, D., LAMAND, M. 1991.

Experimental Corynebacterium pseudotuberculosis infection in lambs: kinetics of bacterial dissemination and inflamation. Vet Microbiol, 26: 381-392.

PEREA, A. ARENAS, A. MALDONADO, C. TARRADAS, IJ.C. GÓMEZ-VILLAMANDOS,

P .SÁNCHEZ, M. QUEZADA, Y L. CARRASCO. 1999 Patología de los pequeños rumiantes en imágenes (II).Enfermedades de los adultos Linfadenitis Caseosa Rev. Ciencias Veterinarias Real Canarias. Octubre 1999.

PERÓN.N. T. LIMAS Y J. FUENTES. 1998. El ovino Pelibuey de Cuba.Revisión bibliográfica de algunas características productivas.http://www.fao.org

PHILBEY AW, GLASTONBURY JR, LINKS IJ, MATTHEWS LM. 1991. Yersinia

species isolated from sheep with enterocolitis.Aust Vet J 68: 108–110.

PIONTKOWSKI, M.D.; SHIVVERS, D.W. 1998 Evaluation of a commercially available vaccine against Corynebacterium pseudotuberculosis for use in sheep. Journal of American Veterinary Medicine Association. 212(11): 1765-8

QUINCOSES T.; J.A.MARTÍNEZ; 1995. Vacunación de cabras contra la Linfadenitis caseosa empleando BCG (Bacillus calmette Guerin)-Congreso nacional de ciencias veterinarias. Res. F.18.19 pp .204.

QUINCOSES T.; J.A.MARTÍNEZ; DANIA FERAUD. 1995. Supervivencia
de C. pseudotuberculosisen condiciones controladas y en el medio
ambiente de un area enzootica en época de seca y lluvia. Congreso nacional
de ciencias veterinarias. Res.F.18.17. pp 203.

REAL F, LEÓN L, ACOSTA B, FERRER O, GUTIERREZ C. 1992;
La linfadenitis perineal en la cabra canaria por Corynebacterium
pseudotuberculosis. Med Vet. 9: 444-448.

REAL, F. 1989.- Immunoprevención de la linfadenitis caseosa ovina (por Corynebacterium pseudotuberculosis) mediante B.C.G. (bacilo de Calmette y Guerin). Tesis Doctoral. Universidad de Murcia.

RENDA, A. EFRAÍN CALZADILLA, MARTA JIMÉNEZ Y
JOAQUÍN SÁNCHEZ 1997. El silvopastoreo en Cuba Instituto
de Investigaciones Forestales, Cubaomado del libro La Agroforestería
en Cuba, Red Latino Americana de Cooperación Técnica en Sistemas
Agroforestales, Santiago de Chile .

RESPALDIZA CARDEÑOSA E.,RESPALDIZA FERNÁNDEZ
E.,2001 Bronconeumonías verminosas del ovino y del caprino.
Revista del consejo general de colegas veterinarios de España. http://www.colvet.es/infovet

RICHARD Y, FONTAINE M, ONDAR J. 1979 Contribution a l´étude de l´épidemiologie et la pathogenie de la maladie des abscés du mouton. Comp Immunol Infect Dis 2: 125-148.

RIISING HJ, HESSELHOLT M. 1973 Lymphadenitis in danish cattle caused by a Corynebacterium. Nordic Vet Med. 25: 131-150

RIZVI S, GREEN LE, GLOVER MJ. 1997 Caseous lymphadenitis: an increasing cause for concern. Vet Rec.; 140: 586-587

RODRÍGUEZ O.N.1972.Semiología y clínica propedeutica veterinaria.Ministerio de Educación Superior. ISCAH. pp.397-404

SÁNCHEZ A, MÚZQUIZ JL, ALONSO JL. 1979 Linfadenitis caseosa ovina. IV Jorn Cient. Soc Esp Ovinotecn., 7-9 Junio, Zaragoza.

SCHREUDER BE, TER LAAK EA, GRIESEN HW. 1986An outbreak of caseous linphadenitis in dairy goats: first report of the disease in the Netherlands. Vet Quart.; 8: 61-67.

SCHREUDER-BE; TER-LAAK-EA; DERCKSEN-DP. 1994 Eradication of caseous lymphadenitis in sheep with the help of a newly developed ELISA technique. Vet- Rec. Aug 20; 135(8): 174-6

SCOTT PR, COLLIE DD, HUME LH. 1984; Caseous Lymphadenitis in a commercial ram in Scotland. Vet Rec. 1997; 141: 548-549Lloyd S. Caseous lymphadenitis in sheep and goats. In pract. 16:24-29.

SEDDIK A, EL-TIMAWY AA, EL-AMOROUSY S, ZAKKI M, EL-ALLAWY T, AZIZ JK

1983. Some studies on Caseous lymphadenitis of lambs in Egypt. Assiut Vet Med J.; 11: 99-106.

SEOANE SANDELIS G.. 1999. Repúblicade Cuba. Investigación Salud animal. www.caribvet.net/Downloads/Gosier/2-Cuba.pdf –

SHARMA DN, DWIVEDI JN. 1976 Pseudotuberculosis lesions in lungs of sheep and goat Indian. J Am Sci; 46: 663-665.

SIMMONS, C. P.; DUNSTAN, S.J.; TACHEDJIAN, M.; KRYWULT, J.; HODGSON, A.L.;

STRUGNELL, R.A. 1998 Vaccine potential of attenuated mutants of Corynebacterium pseudotuberculosis in sheep. Infection and Immunity. 66(2): 474- 9.

SIMMONS, C.P.; HODGSON, A.L; STRUGNELL, R.A. 1997 Attenuation and vaccine potential of aroQ mutants of Corynebacterium pseudotuberculosis. Infection and Immunity. 65(8): 3048-56

SKALKA B, LITERAK I, MICHALIK I, SKRIVANKEK M. 1998 Corynebacterium

pseudotuberculosis infections in goats in the Czech Republic. Zentralbl Veterinarmed (B).; 45: 31-35.

SLEE KJ, BUTTON C. 1990. Enteritis in sheep, goats and pigs due to Yersinia pseudotuberculosis infection. Aust Vet J 67: 320–322.

SMITH IJ, SQUIRES MB, MCGREGOR H. 1997 Caseous lymphadenitis: an increasing cause for concern. Vet Rec. 140 : 635.

SMITH MC, ROGUINSKI M. 1977; Mastitis and others diseases of the goat´s udder. clinical cases and consideration of aetio-pathogenesis. J Am Vet Med Assoc. 171: 1241-1248.

SMITH, M.C., SHERMAN, D.M. 1994. Caseous lymphadenitis. En "Goat Medicine".

Lea & Febiger, Philadelphia, USA, 46-49.

STANFORD, K.; BROGDEN, K.A.; MCCLELLAND, L.A.; KOZUB, G.C.; AUDIBERT, F.

1998 The incidence of caseous lymphadenitis in Alberta sheep and assessment of impact by vaccination with commercial and experimental vaccines. Canadian Journal of Veterinary Research. 62(1): 38-43.

STING,-R; STENG,-G; SPENGLER,-D. 1998 Serological studies on Corynebacterium pseudotuberculosis infections in goats using enzyme-linked immunosorbent assay. Zentralbl-Veterinarmed-[B]. May; 45(4): 209-16

STOOPS, S.G., RENSHAW, H.W., THILSTED, J.P. 1984. Ovine caseous
lymphadenitis: disease prevalence, lesions distribution, and thoracic
manifestations in a population of mature culled sheep from Western United States.
Am J Vet Res, 43: 557-561.

TER-LAAK-EA; BOSCH-J; BIJL-GC; SCHREUDER-BE. 1992 Double-antibody
sandwich enzyme-linked immunosorbent assay and immunoblot analysis
used for control of caseous lymphadenitis in goats and sheep. Am-J-Vet-Res.
Jul; 53(7): 1125-32

UNANIAN, M.M., FELICIANO-SILVA, A.E., PANT, K.P. 1985. Abscesses
and caseous lymphadenitis in goats in tropical semi-arid north-east
Brazil. Trop Anim Health Prod, 17: 57-62.

URQUIAGA VARELA R. (1994). J.Red diagnóstica. IMV . Nacional.(comunicación personal).

VALLI VE. 1991. El sistema hematopoyético. En: Patología de los animales domésticos (Jubb KV, Kennedy PC, Palmer N Ed), 3º ed, Hemisferio Sur, Montevideo, p. 236.

VELASCO DIEGO, J.; FERNÁNDEZ BENITO, V 1995 Estudio Patológico de Caso Clínico de Linfoadenitis Caseosa Ovina.Primer congreso virtual veterinario por imagenes / Badajoz 12-14. 37003

WALKER, J.; JACKSON, H.J.; EGGLETON, D.G.; MEEUSEN, E.N.; WILSON, M.J.;

BRANDON, M.R. 1994; Identification of a novel antigen from Corynebacterium pseudotuberculosis that protects sheep against caseous lymphadenitis. Infection and Immunity. 62(6): 2562-7

WILLIANS CSF. 1981 Diagnostic differentiel e la lumphadenie caseèuse chez le chévre. Le Point Vet.; 12: 51-56.

WINTER AC. 1997 Caseous lymphadenitis: an increasing cause for concern. Vet Rec.; 140: 611.

YERUHAM I, ELAD D, VAN-HAM M, SHPIGE NY, PERL S. 1997; Corynebacterium
pseudotuberculosis infections in Israel cattle: clinical and epidemiological
studies. Vet Rec. 140:423-427.

ZAKI MM. 1965. A study of some strains of Corynebacterium pseudotuberculosis ovis from different animal species with special reference to their pathogenicity. Ph D.Thesis. University of London

ZARZUELO, E. 1981. Linfadenitis caseosa. In "Patología Infecciosa". Publicaciones Científicas Ovejero. León. 361-369.

Autor:

Omelio Cepero Rodriguez

Jorge Orlay Serrano Torres

Curriculum Omelio Cepero Rodriguez

Graduado en la carrera de Medicina Veterinaria. Defendió su doctorado en Leipzig, Alemania. 1988. Tiene publicado 184 trabajos en revistas Nacionales e Internacionales. Miembro titular de la Sociedad de Epizootiologia. Profesor Titular del Departamento de Medicina Veterinaria. Desde el año 1992 dirige el tema de Investigación: "Impacto de los desastres en la salud y producción animal y vegetal en la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad Central de las Villas. Autor de catorce libros. Ha participado en más de 100 eventos Nacionales, Internacionales y Provinciales.